分离纯化的目的是什么

生物物质的分离纯化过程如下: 1.提取:指制备物与细胞固体成份或其他结合成份的分离,由固相转入液相或从细胞内生理状态转入外界特定溶液环境的过程: 2.固液萃取:提取时由固相转入液相: 3.液液萃取:提取时由一液相转入另一互不相溶的液相. 注意:若溶质.溶剂相互作用占优势,则溶质的溶解度大:若溶质.溶质或溶剂.溶剂其中一个系统相互作用很强,或者两个系统相互作用都很强,则溶质在该溶剂中的溶解度小.

取10cm左右深层土壤10g备用制备土壤稀释液:称取土壤1g,放入有99mL无菌水的三角瓶中,振荡均匀,即为稀释10-2的土壤悬液然后进行十倍梯度稀释,依次制备稀释度的土壤稀释液:按培养基配方各配置牛肉膏蛋白胨琼脂培养基.马丁氏培养基.高氏Ⅰ号培养基各100ml.灭菌后分别倒3个平板.:用无菌吸管吸取0.1ml相应浓度土壤稀释液,以无菌操作技术接种在平板上,涂布均匀.细菌选用三个稀释度接种于牛肉膏蛋白胨琼脂培养基,放线菌与霉菌选用三个稀释度,分别接种于高氏Ⅰ号培养基.马丁氏培养基:细菌平板于37

结晶属于扩散分离:结晶是利用溶质之间溶解度差别进行分离纯化的一种扩散分离操作. 热的饱和溶液冷却后溶质因溶解度降低导致溶液过饱和,从而溶质以晶体的形式析出,这一过程叫结晶. 冷却结晶:溶质在溶剂中的溶解度受温度的影响很大,将热的饱和溶液冷却,溶质会因为在溶剂中的溶解度下降而结晶析出. 蒸发浓缩:通过减少溶剂的量,使饱和溶液中的溶质结晶析出. 原理应该是:溶质在一定量的溶剂中可溶解的量是一定的.

细菌分离与培养的程序:如果是液体培养基,那分离起来就比较困难,要用到专门的冻干设备,还要加很多柔和的保护性物质. 所以在一般的情况下最好的办法是把细菌接种到固体培养基上,这样长出来的菌落或菌苔就是你所要分离出的细菌了. 原理:通过在平板上划线,将混杂的细菌在琼脂平板表面充分的分散开,使单个细菌能固定在一点上生长繁殖,形成单个菌落,以达到分离纯种的目的.若需从平板上获取纯种,则挑取一个单个菌落作纯培养.

酶的回收率和纯化倍数具体描述如下: 酶的纯度倍数等于每次比活力除以第一次比活力.比活力等于活力单位数除以mg蛋白氮等于总活力单位数除以总蛋白mg酶活力也称酶活性,履指酶催化一定化学反应的能力.酶活性是研究酶的特性,分离纯化以及酶制剂生产和应用时的一项不可缺少的指标.酶活力是用在一定条件下,它所催化某一反应的反应初速度来表示.酶反应速度指初速度可用单位时间内单位体积中底物的减少量或产物的增加量来表示.纯化倍数是纯化后的比活除以纯化前的比活.

1.平板划线法是指把混杂在一起的微生物,或同一微生物群体中的不同细胞,用接种环在平板培养基表面,通过分区划线稀释而得到较多独立分布的单个细胞,经培养后生长繁殖成单菌落,通常把这种单菌落当作待分离微生物的纯种: 2.平板划线法目的是将微生物样品在固体培养基表面多次作"由点到线"稀释而达到分离,用于目的微生物的分离,便于得到目的性状的单克隆,如大肠杆菌.枯草芽孢杆菌混合菌悬液,工具有无菌培养皿,水浴锅,接种环等.

常用的分离提纯的方法有以下几种: 1.分级结晶法.这种方法常用加热蒸发溶液,控制溶液的密度,使其中一部分溶质结晶析出.经反复的操作可以达到分离提纯的目的. 2.分步沉淀法.这种方法常选用适宜的试剂或调节pH,使溶液中的某一部分沉淀析出.经反复的操作,也可达到分离提纯的目的. 3.选择性氧化还原法.用适宜的氧化剂或还原剂,使混合物中的某些成分氧化或还原,并进一步达到分离提纯的目的. 4.吸收.吸附法.用适宜的试剂吸收混合物中的某些成分,例如用烧碱吸收混合气体中的二氧化碳.或者用适宜的物质吸附混合物

分区划线法的目的是分离出单菌落,每个区的菌落密度是逐级递减的,如果划完高密度的菌落不把接种环上的菌烧死,那么下一个区的菌落密度就会和上一个区的密度几乎没差别,达不到分离单菌落的目的

透析是通过小分子经过半透膜扩散到水(或缓冲液)的原理,将小分子与生物大分子分开的一种分离纯化技术. 血液透析所使用的半透膜厚度为10-20微米,膜上的孔径平均为3纳米,所以只允许分子量为1.5万以下的小分子和部分中分子物质通过,而分子量大于3.5万的大分子物质不能通过.因此,蛋白质.致热原.病毒.细菌以及血细胞等都是不可透出的:尿的成分中大部分是水,要想用人工肾替代肾脏就必须从血液中排出大量的水分,人工肾只能利用渗透压和超滤压来达到清除过多的水分之目的.所使用的人工肾即血液透析装置都具备上述这些